黄嘌呤氧化酶(XOD)检测试剂盒 ; 50管/48样
测定意义：
XOD（EC 1.17.3.2 ）催化黄嘌呤氧化生成尿酸和超氧阴离子，是活性氧主要来源之一；同时也是核苷酸代谢的关键酶之一。XOD主要分布于哺乳动物的心，肺，肝脏等组织中，当肝功能受损时，XOD大量释放到血清中，对肝损害的诊断具有特异性的意义。
测定原理：
XOD催化黄嘌呤产生尿酸，尿酸在290nm下有特征吸收峰。
需自备的仪器和用品：
紫外分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制：
提取液：60mL×1瓶，4℃保存；
试剂一：60mL×1瓶，4℃保存；
试剂二：粉剂×4瓶，4℃保存。
粗酶液提取：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（10⁴个）：提取液体积（mL）为500~1000 ：1的比例（建议500万细菌或细胞加入1mL 提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率20％或200W ，超声3s ，间隔10s ，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1 ：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液），进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
操作步骤：
1、分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至290nm，蒸馏水调零。
2、XOD检测工作液的配制：用时在每瓶试剂二中加入15mL试剂一，充分混匀，待用；现配现用；
3、测定前将XOD检测工作液在37℃（哺乳动物）或25℃（其它物种）水浴10min以上。
4、取1mLXOD检测工作液于1mL石英比色皿中，再加入35μL样本，混匀，室温下立即测定290nm下的初始吸光值A1和1min后的吸光值A2 ，计算ΔA＝A2-A1。
XOD活性计算：
1、血清（浆）XOD计算：
单位的定义：每毫升血清（浆）每分钟催化产生1nmol尿酸定义为一个酶活力单位。 XOD(nmol/min/mL）＝[ΔA×V反总÷ (ε×d）×10⁹]÷V 样÷T=2424×ΔA
2、组织、细菌或细胞中 XOD 计算：
(1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol尿酸定义为一个酶活力单位。XOD（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V反总÷ (ε×d）×10⁹]÷(V 样×Cpr)÷T =2424×ΔA÷Cpr
(2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每g组织每分钟催化产生1nmol尿酸定义为一个酶活力单位。XOD（nmol/min/g鲜重）＝[ΔA×V反总÷(ε×d）×10⁹]÷（W×V样÷V样总）÷T=2424×ΔA÷W
(3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每一万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol尿酸定义为一个酶活力单位。XOD（nmol/min/10⁴cell）=[ΔA×V反总÷ (ε×d）×10⁹]÷（500×V样÷V样总）÷T=4.848×ΔAV 反总：反应体系总体积，1.035×10-³L；ε ：尿酸摩尔消光系数，1.22×10⁴L/ mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.05mL；V 样总：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，1min；W：样本质量，g；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；500：细胞或细菌总数，500万。
