BCA蛋白法含量检测试剂盒 ; 100T/96S
测定意义：
样品可溶性蛋白质含量常常用于酶活性计算。此外，可溶性蛋白质含量也用于食品等质量分析。
测定原理：
碱性条件下，蛋白质中半胱氨酸、胱氨酸、色氨酸、酪氨酸以及肽键，能将 Cu²+还原成 Cu+；2 分子的 BCA与 Cu+结合，生成紫色络合物，在 540-595nm 有吸收峰，562nm 处吸收峰最强。
自备仪器和用品：
台式离心机、恒温水浴锅、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板、移液器和蒸馏水。
试剂组成和配制：
试剂 A：液体 25mL×1 瓶，4℃保存。
试剂 B：液体 0.5mL×1 支，4℃保存。
标准品：液体 2mL×1 支，4℃保存。
工作液配制：
临用前请根据拟用工作液体积（样本数×0.2mL），将试剂 A 和 B 按照 50 ：1 的比例混合，盖紧后充分混匀。
样品中可溶性蛋白质提取：
1、液体样品：澄清液体样品可以直接测定。
2、组织样品：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL提取液（自备，根据需要选用酶提取缓冲液或者蒸馏水或者生理盐水）冰浴匀浆，10000rpm ，4℃离心 10min，取上清，即待测液。
3、细菌、细胞：按照细胞数量（10⁴个）：提取液体积（mL）为 500~1000 ：1 的比例（建议500万细胞加入 1mL 提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w ，超声 3 秒，间隔7秒，总时间 3min）；然后10000rpm，4℃ , 离心10min，取上清置于冰上待测。
测定操作：
1、可见分光光度计/酶标仪预热30min ，调节波长到 562 nm，蒸馏水调零。
2、工作液置于 60℃水浴预热 30 min。
| 空白管 | 标准管 | 测定管 |
蒸馏水(μL） | 4 | | |
标准品(μL） | | 4 | |
待测液(μL） | | | 4 |
工作液(μL） | 200 | 200 | 200 |
混匀后置于60℃保温30min,于微量玻璃比色皿/96孔板,于562nm 处测定吸光值A,分别记为A空白管、A标准管、A 测定管。 |
计算公式：
Cpr (mg/mL)= C 标准品×(A测定管－A空白管)÷(A标准管－A空白管)=0.5×(A测定管－A空白管)÷(A标准管－A空白管)
Cpr (mg/g 鲜重)=C标准品×(A测定管－A空白管)÷(A标准管－A空白管)÷ W= 0.5×(A测定管－A空白管)÷(A标准管－A空白管)÷ W
W: 样本质量，g
注意事项：
1、BCA 法蛋白含量测定试剂盒，适用于测定蛋白浓度在 20-5000μg/ml 样品。测定前取 1-2 个样做预实验，若A 测定管－A 空白管﹥ 1.5，需将样本用提取液稀释后再测定，以确保测定的准确性。
2、空白管和标准管只需要做一次。
