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普鲁兰酶活性检测试剂盒/ 96样

普鲁兰酶活性检测试剂盒/ 96样

  • 货号:YJ49986
  • 可售卖地:全国
  • 供货:现货供应
  • 保 质 期:半年
  • 品牌:源桔生物
  • 保存温度:2-8℃
  • 检测方法:微板法
  • 分类:其它系列
  • 规格:96样
  • 用途:仅供科研使用
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源桔生物 YJ49986 96样 ¥1470 大量 液体盒装
  • 商品详情

普鲁兰酶活性检测试剂盒/ 96样

测定意义: 

普鲁兰酶是一种水解酶,广泛存在于微生物及动物、植物体内,能专一地分解淀粉和糖原及其衍生物分枝点的α-1.6-葡萄糖昔键。它的这种特性早被用于淀粉结构的理论研究,到七十年代,普鲁兰酶的应用已扩展到淀粉糖浆、啤酒和酒精生产等多个淀粉深加工领域,并逐步从实验室阶段走向工业化规模。普鲁兰酶催化普鲁兰分解产生还原糖,进一步与3,5-二硝基水杨酸反应,生成棕红色氨基化合物,经光谱扫描在540nm  有特征光吸收,在一定范围内540nm  光吸收值与还原糖生成量成正比。通过光吸收增加速率来计算普鲁兰酶活性大小。

试剂组成和配制:

试剂名称

规格

保存要求

备注

提取液

液体100mL×1瓶

4℃保存

 

试剂一

液体30mL×1瓶

4℃保存

 

试剂二

粉剂mg×1支

4℃保存

用前甩几下使粉剂落入底部,再加入22mL试剂一充分溶解备用;用不完的试剂4℃保存;

试剂三

液体20mL×1瓶

4℃保存

 

标准品

粉剂mg×1支

4℃保存

若重新做标曲,则用到该试剂。

所需的仪器和用品:

酶标仪、96 孔板、低温离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵、冰和蒸馏水。

普鲁兰酶活性测定:

建议正式实验前选取2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验样本和试剂浪费!

1、样本制备:

组织样本:取约0 .1g组织(水分充足的样本可取0.5g)到研钵内,加入1mL提取液,在冰上进行 冰浴匀浆或者液氮研磨。12000rpm,4℃离心1 0min, 取上清,置冰上待测。

注 : 也可以按照组织质量 (g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例提取。

液体样本:直接测定。若浑浊,离心后取上清检测。

2、上机检测:

酶标仪预热30min 以上,调节波长至540nm。

在EP管中依次加入:

试剂名称(μL)

测定管

对照管

样本

20

20(95℃煮沸10min的酶液)

试剂二

100

100

混匀,50℃孵育30min

试剂三

100

100

混匀,95℃水浴10min(用封口膜缠紧,以防止水分散失),流水冷却至室温。

蒸馏水

500

500

混匀,取出200μL至96孔板中,540nm处读取吸光值A,△A=A测定-A对照(每个样本做一个自身对照)。

注 : 

1、若 A 测定管的吸光值大于2,可以用蒸馏水对整个显色混合液用蒸馏水进行稀释(如取显色混合液100 μL 至96孔板中,再加100 μL 蒸馏水,即稀释2倍),则稀释倍数 D  需代入公式计算。或减少上清液体积 V1 (如减至10μL, 则加10 μL 蒸馏水补齐),则 V1 需代入公式重新计算。

2、若△A 值在零附近徘徊,可增加样本加样体积 V1  (如增至40μL,  则后蒸馏水体积相应减少,保持反应总体积不变),或延长50℃孵育时间 T (如增至60min), 则相应的 V1和反应时间 T 需代入公式重新计算。△A 在零附近徘徊,可在样本制备时加大取样质量 W(如增至0.5g), 或在上机检测时加大上样量 V1 (由50 μL 增加到100μL, 则试剂一相应减少,保持总体积不变),或延长反应时间 T (如增至60min), 则改变后的 W、V1和T 需带入计算公式重新计算。

结果计算:

1、标准曲线方程:

      y=8.154x-0.0438;x为标准品质量 (mg),y为△A。


image.png


2、按蛋白浓度计算:

     单位定义:

     37℃每毫克蛋白每分钟产生1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

     普鲁兰酶活性(μg/min/mgprot)=[(△A+0.0438)÷8.154×103]÷(V1×Cpr)÷T=204.4×(△A+0.0438)÷Cpr

3、按鲜重计算:

     单位定义:

     37℃每克组织每分钟产生1 μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

     普鲁兰酶活性(μg/min/g鲜重)=[(△A+0.0438)÷8.154×103]÷(W×V1÷V2)÷T =204.4×(△A+0.0438)÷W

4、按液体样本计算:

     单位定义:

     37℃每毫升液体样本每分钟产生1 μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

     普鲁兰酶活性(μg/min/mL液体)=[(△A+0.0438)÷8.154×103]÷W×V1÷T=204.4×(△A+0.0438)V---加入提取液体积,1mL;V1---加入反应体系中       样本体积,0.02mL;T--- 反应时间,30min;W--- 样本鲜重,g;Cpr--- 样本蛋白质浓度,mg/mL;  建议使用本公司的蛋白含量(考马斯亮蓝法)试剂         盒,不建议使用蛋白含量(BCA 法)试剂盒;

附:标准曲线制作过程:

1、制备标准品母液(5mg/mL):   向标准品 EP 管里面加入1mL  蒸馏水(母液需在两天内用且-20℃保存)。

2、把母液稀释成六个浓度梯度的标准品:0,1,2,3,4,5.mg/mL。 也可根据实际样本来调 整标准品浓度。

3、按照:20μL 标准品+100 μL 蒸馏水+100 μL 试剂三,95℃水浴10min, 冷却后,再加500μL 蒸馏水,混匀,取200μL 至96孔板中,540nm下测定,根据结果即可制作标准曲线。