肝/肌糖原检测试剂盒 ; 50管/48样
测定原理：
糖原在浓硫酸的作用下可脱水生成糖醛衍生物，后者再与蒽酮作用形成蓝色化合物，与同法处理的标准葡萄糖溶液比色定量。糖原在浓碱溶液中非常稳定，故在显色之前先将组织放入浓碱中加热以破坏其它成分而保留糖原。
试剂组成与配制：
试剂一：水解液，40ml ×1瓶，室温或 2～8℃保存 6个月。
试剂二：1mg/ml标准品贮备液，5ml ×1支，室温或2～8℃保存 6个月。
0.01mg/ml标准应用液的配制：1mg/ml标准品贮备液∶双蒸水=1∶99，现用现配。
试剂三：显色剂，粉剂×6支，室温或 2～8℃保存 6个月。用时每支加浓硫酸 25ml（浓硫酸自备），混匀，现用现配。
样本前处理：
1、 取样：取新鲜肝脏、肌肉样本用生理盐水漂洗后，滤纸吸干，称重（样本重量≤100mg 为宜，不要＞100mg）。
2、水解：按样本重量（mg）∶水解液体积(μl）=1 ∶3 ，一起加入试管中，沸水浴煮20min，流水冷却。
3、将糖原水解液进一步制备成糖原检测液：
肝糖原检测液为1%，加双蒸水的量为：肝脏重量×100—肝脏重量×4*=肝脏重量×96肌糖原检测液为5%，加双蒸水的量为：肌肉重量×20—肌肉重量×4*=肌肉重量×16
注：4*为水解时碱液与组织的体积数。
例如上例：制备 1%肝糖原检测液，加双蒸水的量为：75×96=7200μl =7.2 ml ；制备 5%肌糖原检测液，加双蒸水的量为：85×16=1360μl =1.36ml。
操作表：
1、样本前处理：样本处理详见说明书。测定组织和细胞同时需要测定蛋白浓度。可用总蛋白定量测试盒（考马斯亮蓝法）或者总蛋白定量测试盒(BCA 法)进行蛋白浓度的测定。
2、操作表：
| 空白管 | 标准管 | 测定管 |
双蒸水(ml) | 1.0 | | 0.9 |
0.01mg/ml标准液(ml) | | 1.0 | |
糖原检测液(ml) | | | 0.1 |
显色液(ml) | 2 | 2 | 2 |
混匀后置沸水中煮5min，冷却后于620nm波长，1cm光径，空白管调零，测各管 OD值。 |
计算公式：
