吡哆醛含量检测试剂盒 ; 50T/48S
测定意义:
吡哆醛(pyridoxal ,PL)是维生素B6的组成成分之一 ,是氧化吡哆醇所得到的醛 ,广泛存在于肉类、谷类、蔬菜及坚果中。 吡哆醛在生物体内主要的活性辅酶形式是磷酸吡哆醛( PLP),是 转氨酶、脱羧酶、消旋酶等多种酶的辅酶。
吡哆醛在一定条件的光激发下具有荧光效果,可以利用高效液相色谱法荧光检测器测定其含量。荧光检测器灵敏度较高 ,常用于痕量分析。
测定原理:
AH 催化苯胺羟化后产生的 4-氨基酚,进一步转变为酚-吲哚复合物,在 630nm 处有特征吸收峰;通过测定630nm 吸光度增加速率,来计算 AH 活性。
试验中所需的仪器和试剂:
高效液相色谱仪( Polaris C18-A 色谱柱(4.6 ×250 mm),荧光检测器( FLD))、台式离心机、可调式移液枪、研钵/匀浆器、EP 管(1.5 mL)、针头式过滤器(水系)、注射器、抽滤器、滤膜 (水系、有机系)、棕色进样瓶、超纯水、 甲醇(色谱纯)。
试剂盒组成和配制:
提取液 :液体30 mL ×1瓶 ,4℃保存;本提取液中含有不溶物 ,需摇匀后使用。
试剂一:液体5mL ×1瓶 ,4℃保存。
试剂二:液体1.5 mL × 1瓶, 4℃保存。
试剂三:粉剂×2 瓶 ,4℃保存。
标准品:粉剂 ×1 瓶,4℃避光保存。临用前加入 0.821 mL 蒸馏水配制成 5 mg/mL 吡哆醛标准 溶液 ,4℃密封保存,避免阳光直射。
实验前准备工作:
1、瓶试剂三溶解到 1000mL 超纯水中,再加入 0.55 mL 的试剂二,混匀,得到流动相A。
2、将 1000 mL 配制好的流动相A、甲醇(色谱纯)用滤膜抽滤。(配制好的流动相 A 采用 0.22 µm 水系滤膜抽滤,甲醇采用 0.45µm 有机系滤膜抽滤)。
3、将抽滤好的流动相超声 20 min,除去气泡。
4、标准品的配制:将5mg/mL的吡哆醛标准溶液采用倍比稀释的方法分别用蒸馏水稀释成16000ng/mL、3200 ng/mL、640 ng/mL、128 ng/mL、25.6 ng/mL的吡哆醛标准溶液。(标准品浓度 仅供参考 ,可根据实际样品浓度进行调整)。4℃避光保存(密封),测试前采用水系针头式过滤 器过滤到棕色进样瓶内,待测。
操作步骤:
一、吡哆醛的提取:
组织样本:按质量(g) :提取液体积(mL)1:5~ 10比例,建议称取 0. 1g样本(新鲜样本:剪 碎;烘干样本 :研磨过筛),加入 0.6 mL 提取液(新鲜样本需匀浆),密封 ,混合均匀 ,置于60℃水浴锅中浸取30 min。冷却至室温 ,加入 0. 1 mL 试剂一 ,0.3 mL蒸馏水,混匀,静置2 min。10000rpm 离心10 min,取上清液(若仍有浑浊 ,可再次离心),测试前采用水系针头式过滤器过滤到棕 色进样瓶内,待测(若上清液颜色过深或者浓度过高 ,可稀释后再次过滤待测)。
细胞 :按细胞数量(10⁴):提取液体积( mL) 1000 ~5000 万:1比例,建议取 5000万细胞,加入0.6 mL提取液,超声破碎细胞(功率 20%,超声3s,间歇9s,重复30次,总时间 :6 min),密封混匀 ,置于60℃水浴锅中浸取30 min。冷却至室温,加入0. 1mL 试剂一 ,0.3 mL 蒸馏水,混匀, 静置2 min。10000 rpm离心 10 min ,取上清液(若仍有浑浊,可再次离心),测试前采用水系针头 式过滤器过滤到棕色进样瓶内,待测。
血清 :按血清体积( mL):提取液体积(mL)1~5:1比例,建议取0.5 mL血清,加入 0. 1 mL 提 取液,密封混匀,置于 60℃水浴锅中浸取30 min 。冷却至室温,加入 0. 1 mL试剂一,0.3 mL蒸馏水,混匀,静置2 min。10000 rpm 离心10 min,取上清液(若仍有浑浊,可再次离心),测试前采 用水系针头式过滤器过滤到棕色进样瓶内,待测。
二、测定步骤:
1、开启电脑、打开液相色谱仪各模块开关按钮,安装上色谱柱,打开软件,在方法组中设置进样量为10 µL,柱温:30℃, 流速为1mL/min,荧光检测器: Ex =293 mn , Em=395 nm。单个样本走样时间10 mi,设置完毕保存方法组。
2、采用相应的流动相清洗柱子,用流动相A平衡柱子,待基线稳定后开始加样。
3、检测待测的标准品溶液,进样量为10 µL,在10 min内可分离出吡哆醛,吡哆醛的保留时间为6.3 min 左右(体系、柱子、流动相pH、温度等不同,保留时间有差异,仅作为参考)。
4、检测待测的样品溶液,进样量为 10 µL,在相应的保留时间处检测吡哆醛的峰面积。
5、序列完整加样表:(包含单个样本测定完成后色谱柱的清洗和再平衡过程)
时间(t) | 甲醇(%) | 流动相 A(%) |
0 min | 0 | 100 |
1 min | 0 | 100 |
1. 1 min | 3 | 97 |
10 min | 3 | 97 |
10. 1 min | 60 | 40 |
20 min | 60 | 40 |
20. 1 min | 0 | 100 |
30 min | 0 | 100 |
三、吡哆醛含量计算
以标准品浓度(ng/mL)为横坐标,峰面积为纵坐标绘制吡哆醛的标准曲线,将样本的峰面积代入标准曲线 ,计算提取液中吡哆醛的浓度 x(ng/mL)。
1、组织样本
吡哆醛的含量(µg/g)= x×V 提取÷W ×F÷1000 =0.001x÷W × F
V提取 :加入提取液总体积,1mL;W:样本质量,g;F:样本稀释倍数(稀释后测试的样本,计算时需要乘以相应的稀释倍数);1000:单位转 化系数,1 μg = 1000ng。
2、细胞样本
吡哆醛的含量(µg/10⁴细胞= x ×V 提取÷细胞数量(10⁴ )× F÷ 1000 =0.001x÷细胞数量(10⁴) × FV 提取:加入提取液总体积 ,1 mL(0.6mL 提取液+0. 1mL 试剂一+0.3mL 蒸馏水);细胞数量:单位10⁴;F:样本稀释倍数(稀释后测试的样本 ,计算时需要乘以相应的稀释倍 数);1000:单位 转化系数,1μg = 1000ng。吡哆醛的含量(µg/mL)= x×V
3、血清样本
提取÷V 样本×F÷1000 =0.002x×FV 提取:提取液总体积,1 mL(0.5mL血清+0. 1mL提取液+0. 1mL 试剂一+0.3mL 蒸馏水);V样本:加入 样本体积 ,0.5 mL;F:样本稀释倍数(稀释后测试的样本,计算时需要乘以相应的稀释 倍数);1000:单位转化系数,1μg =1000ng。
注意事项:
1、本试剂盒的提取液中含有不溶物,需摇匀后使用。
2、测试完毕后 ,需要用高浓度的超纯水相冲洗色谱柱(约 20-30 个柱体积),以防阻塞色谱柱,再用高浓度的有机相冲洗色谱柱 ,按柱子的种类规范冲洗,防止损伤色谱柱。
3、标准品的稀释倍数要根据样品中吡哆醛的浓度确定 ,样品中吡哆醛的峰面积必须在不同浓度的标 准品溶液的峰面积之内 ,该标准品的稀释倍数只是一个参考。若样本中吡哆醛浓度过高,建议用蒸 馏水稀释后再测。
4、若样本量过大,建议每天测试一次标准溶液(一个浓度的标准溶液即可),以确定相应的保留时间,待测溶液测试前须放置至室温状态。